玫瑰（Rosa rugosa）是蔷薇科、蔷薇属直立灌木，花色艳丽，香气宜人，是世界上重要的观赏花卉之一，亦是提制香精用于各类高级食品、化妆品的重要原料。玫瑰品种繁多，其园艺品种为重瓣、不结实，多采用扦插、嫁接、压条等无性繁殖，所需周期长，产量有限，远远不能满足市场需求。玫瑰品种改良传统上依靠自然或人工选择、自然突变、育种进展一直比较缓慢，主要是由于大多数栽培品种为四倍体和高度异质性，而且基因库贫乏，常导致自交不孕和雄性不育，致使通过传统的育种方法改良品种的过程变得冗长。遗传工程技术队改良现存品种显示了极大的潜力，这样可以不破坏生产上理想的表型性状而引入需要的外源基因，改良性状包括抗病虫、花色、花形、瓶插寿命等。玫瑰转基因的研究一直受到人们的关注，建立良好的受体系统是玫瑰遗传转化的重要环节。
试管繁殖技术：
1 生产工艺流程
带腋芽段 诱导不定芽 生根培养 移栽
2 快繁技术要点
（1）选材 消毒和接种 选优良键壮 当年生枝条中段（带饱满而未萌发的侧芽），用自来水冲洗干净， 流水冲洗10—30分钟，用0.1％—0.15％的绿化汞醇溶液消毒8—12分钟，无菌水洗4—5次，剪成1—2厘米，带腋芽的茎段接种。培养温度21℃—25℃，光照强度为1000LX—2000LX，每天光照12小时。
（2）诱导丛生芽 将消毒好的带腋芽茎段接于MS+6-BA2.0毫克/升+NAA0.1+GA3 2.0毫克/升+蔗糖30克/升的培养基上，2周—3周后腋芽可长至1厘米左右。然后将长出的腋芽转入MS+BA0.2毫克/升+NAA0.5毫克/升+LH500毫克/升+蔗糖1000毫克/升的培养基上，5周—6周可继代增殖一次，形成许多丛生芽。
（3）继代培养 将形成丛生芽的玫瑰长至2—3厘米左右，在无菌条件下将愈伤组织切成1毫米直径的小块，接种到G+BA0.4毫克/升+NAA0.1毫克/升+LH500毫克/升+蔗糖3500毫克/升的培养基上进行继代培养，每周转移到新鲜培养基上一次，大约3周后愈伤组织表面开始形成半球形突起，4—6周后小突起开始向上发生极性生长，突起呈圆柱形，高出愈伤组织体表面0.6mm至1mm，一般在1—2mm2的愈伤组织体上就能产生一个小突起，即为胚壮体。胚壮体内已具备完整的中柱和不完全的韧皮部和周皮。胚壮体已发生极性生长，与植物胚有着同等的意义。
培养条件对组织培养的作用和影响
1 生长素 在G培养基中分别加入NAA、IAA、0.01、0.05、1.0、和2.0毫克/升，进行外植体诱导愈伤组织的研究，结果的NAA不仅比IAA愈伤组织诱导率高，而且愈伤组织存活率也高。NAA比IAA愈伤组织诱导率高14％，愈伤组织存活率高5.3％，NAA的浓度以0.5毫克/升最好，在愈伤组织诱导率和存活率都达到较高值时IAA以2.0毫克/升最好。
2 细胞分裂素 试验用0.2—50毫克/升6-BA在G培养基上观察了愈伤组织诱导率，以1.0毫克/升诱导率最高、达43％，结果表明玫瑰外植体培养需较高浓度的6-BA。
3 赤霉素 使用GA3所进行的实验表明休眠枝条使用0.1毫克/升GA3处理后，不仅新芽萌发率提高，而且外植体的生活率也相应提高、从而提高培养的成功率。
4 温度 愈伤组织的产生和生长发育速度与温度有很大的关系，温度高于28℃以上对愈伤组织的产生和发育不利，在15℃以下愈伤组织则停止生长，23℃不仅有利于愈伤组织的产生，而且发育也快。诱导率达47.6％。
5光照 用不同的光照时间处理的结果表明，玫瑰外植体产生愈伤组织过程中对光照十分敏感，在有光和无光的条件下都可长出愈伤组织，弱光有利于形成愈伤组织及愈伤组织的增长。而短光照对愈伤组织诱导率又有利。胚壮体的分化则相反，在强光，长光照的条件下有利于胚壮体的分化。试验以12—14
6 培养基的渗透压与PH 在G培养基上进行不同PH值对愈伤组织形成的影响试验，结果以5.5—6.0PH值为宜。
7 试管苗移栽及生长状况
试管苗移栽以每年的3月—4月为好，也可根据具体形状而定，幼苗出瓶后，先洗去培养基，再栽植到蛭石或稻壳灰+园田土（1：1）；粗沙+园田土（1：3）。栽植密度为2厘米～3厘米**～6厘米，移栽完毕浇透水，并用0.1％百菌清，多菌灵喷雾保苗，在合理的管理条件下，试管苗可以直接栽培到田间土壤里。
移栽后最重要的是保持其相对湿度在85％以上，并注意通气和温度的管理。
试管苗首次移栽1周后，可施些追肥，视苗大小而定，浓度逐渐由0.1％到0.3％左右，肥料种类有复合肥，尿素，磷酸二氢甲，MS培养液，以及饼肥水等。通常7天到10天喷一次杀菌济。试管第二次移栽后，管理上不可放松，须注意除草，施肥防治病虫害并及时 掐去顶芽，尤其是花蕾，以促进侧芽的生长，以促使苗早日壮大，待试管苗出瓶2个月左右，即可上盆，并按常规方法进行水肥管理。
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