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沙门氏菌是食品微生物中致病菌的一种，下面介绍几种检测沙门氏菌的方法。
1、传统的培养方法
用于沙门氏菌分析的传统方法是食物样品分步增菌，以增加病原的可检出率，共有如下四步： ( 1 )预增菌，将样品加到培养基中，温度
2、 以核酸为基础的方法
所有的细胞都含有DNA和RNA这样唯一一类可携带信息的大分子，所以用它作为检测的标靶。 标靶通常是一个特异性核酸序列，它可通过以补体核酸分子作为探针来检出。探针需要加附适当的标记，此法应用的探针含有放射性同位素标记的伤寒沙门氏菌DNA片段， 其敏感性高，经约48小时的增菌步骤后， 检测极限可达1 08个细菌／m l 。目前，以核酸杂交为基础的第二代技术——比色计目前也已发展起来，此法依赖于沙门氏菌核糖体 RNA( rRNA) ——核糖体发育过程中储存的核酸成分的检测。核糖体是细胞蛋白质合成器的一部分，每个细菌细胞中存在5000 ~ 20000个复制体，而相比之下染色体 DNA复制体仅 2 ~10个。 这种天然富含r RNA标靶序列的情况使得用无辐射计检测成为可能，同时又保持了与放射性同位素方法相当 或更高的敏感性。
3、以抗体为基础的检测方法
利用抗原——抗体反应的特异性，进行细菌的鉴别和血清学定性。细菌菌体或鞭毛抗原的特异性抗体的存在，使得人们可以建立一些快速方法来检测以食品为载体的病原。广泛采用的是以双位点ELISA技术即夹心ELISA为基础的方法。此法是指以固定在固体基质上的“捕捉”抗体来捕捉目标抗原，经洗涤除去未结合的成分，加入第二种酶标抗体，此者结合在捕捉到的抗原的不同位点上，第二次洗涤后加入酶作用基质，并令其与颜色成分反应，然后用分光光度法即很容易检测到目标抗原。采用微量滴定板作为固态基质使反应形式标准化，并促成其自动化。
ELISA法检出沙门氏菌的极限范围在105-106个细胞／ml，因此，要得出可靠的结果，食物样品首先必须进行预增菌、选择性增菌，通常还要在含有D一甘露糖的肉汤( M肉汤) 中进行后增菌，以促进鞭毛发育。标准的ELISA法样品制备，经40 ~ 48 小时的孵育才能完成。目前国内口岸系统已应用微量板ELISA法对进出口动物产品进行沙门氏菌检测。该法采用预先包被了沙门氏菌( A- E群) 单克隆抗体的微量板，加入经增菌处理的样品，反应后再加入一定的指示剂， 作用毕后用酶标仪测定OD值来判定结果，微量板ELI SA法样品制备过程分三步，共耗时24小时。( 1 ) 选用营养肉汤进行预增菌6小时，使“致伤”、冷冻的沙门氏菌复苏。( 2)使用选择性培养基RV进行增菌14小时，使沙门氏菌大量繁殖，同时抑制其它杂菌生长。(3) 使用营养肉汤( 蛋白胨水) 进行后增菌4小时，使沙门氏菌的数量大大增加。
4、快速检测方法
(1)平板检测方法。第一阶段，在小孔内加入样品和抗体联合物，孵育期间，沙门氏菌抗原和包被抗体形成了一种复合物：包被单克隆抗体——沙门氏菌抗原——抗体联合物。洗涤后，通过每孔加入基质溶液 ( 过氧化脲) 和色素原溶液( 四甲基氨基丙苯) 来显示上述复合物 ：酶催化色素原的氧化，结果产生蓝色。加入反应终止液终止催化反应，并使反应混合物酸化，颜色由蓝变黄。( 2 ) 卡片检测法。 此法以单步免疫反应即夹心型免疫色谱反应为基础。反应固相包括一块用“抗沙门氏菌抗体——染料”偶合物浸透的染料衬垫和一张薄膜条，抗沙门氏菌抗体就固定在薄膜的反应区上。增菌后，增菌肉汤用移液管加到样品小孔内并令其吸收， 如样品存在沙门氏菌抗原，它们会与偶合物作用，然后依次迁移到膜上，与固定在膜上反应区的抗体结合，在反应窗上呈现一条色带。最后结果可在 5 ~ 7秒内读取。
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