MICROBIAL LIMIT TESTS （微生物限度检查USP）
This chapter provides tests for the estimation of the number of viable 
aerobic microorganisms present and for freedom from designated microbial 
species in pharmaceutical articles of all kinds, from raw materials to the
 finished forms. An automated method may be substituted for the tests 
presented here, provided it has been properly validated as giving equivalent 
or better results. In preparing for and in applying the tests, observe aseptic 
precautions in handling the specimens. Unless otherwise directed, where the 
procedure specifies simply “incubate,” hold the container in air that is 
thermostatically controlled at a temperature between 30 and 35, for a period
 of 24 to 48 hours. The term “growth” is used in a special sense herein,
 i.e., to designate the presence and presumed proliferation of viable 
microorganisms.

这一章规定，测试估计的数目可行的好氧微生物，从指定的微生物物种在制药文章的所有
品种，从原料到成品的形式。一个自动化的方法，可取代的考验就在这里，只要它已妥善
验证给予同等或更好的结果。在准备和在应用试验，观察无菌的预防措施，再处理标本。
除非另有指示，凡指定的程序是简单的“孵化” ，举行容器中的空气是恒温的控制在温度
30至35 ，时间在24至48小时。相对而言， “增长”是用来在一个特殊的意义在这里，即
指定的存在和扩散的微生物。........
 
Preparatory Testing （筹备测试）
The validity of the results of the tests set forth in this chapter rests 
largely upon the adequacy of a demonstration that the test specimens to which 
they are applied do not, of themselves, inhibit the multiplication, under the 
test conditions, of microorganisms that may be present. Therefore, preparatory
 to conducting the tests on a regular basis and as circumstances require
 subsequently, inoculate diluted specimens of the material to be tested with 
separate viable cultures of Staphylococcus aureus, Escherichia coli, 
Pseudomonas aeruginosa, and Salmonella. This can be done by adding 1 mL of not 
less than 10-3 dilution of a 24-hour broth culture of the microorganism to the 
first dilution (in pH 7.2 Phosphate Buffer, Fluid Soybean–Casein Digest
 Medium, or Fluid Lactose Medium) of the test material and following the test
 procedure. Failure of the organism(s) to grow in the relevant medium 
invalidates that portion of the examination and necessitates a modification of 
the procedure by (1) an increase in the volume of diluent, the quantity of 
test material remaining the same, or by (2) the incorporation of a sufficient 
quantity of suitable inactivating agent(s) in the diluents, or by (3) an 
appropriate combination of modifications (1) and (2) so as to permit growth of
 the inocula.
 
The following are examples of ingredients and their concentrations that may be
 added to the culture medium to neutralize inhibitory substances present in 
the sample: soy lecithin, 0.5%; and polysorbate 20, 4.0%. Alternatively, 
repeat the test as described in the preceding paragraph, using Fluid Casein 
Digest–Soy Lecithin–Polysorbate 20 Medium to demonstrate neutralization of 
preservatives or other antimicrobial agents in the test material. Where 
inhibitory substances are contained in the product and the latter is soluble,
 a suitable, validated adaptation of a procedure set forth in the section
 Membrane Filtration under Test for Sterility of the Product to be Examined 
under Sterility Tests 71, may be used.
 
If in spite of the incorporation of suitable inactivating agents and a 
substantial increase in the volume of diluent, it is still not possible to
 recover the viable cultures described above and where the article is not 
suitable for employment of membrane filtration, it can be assumed that the 
failure to isolate the inoculated organism is attributable to the bactericidal 
activity of the product. This information serves to indicate that the article
 is not likely to be contaminated with the given species of microorganism.
 Monitoring should be continued in order to establish the spectrum of 
inhibition and bactericidal activity of the article.

Buffer Solution and Media （缓冲溶液和培养基）
Culture media may be prepared as follows, or dehydrated culture media may be
 used provided that, when reconstituted as directed by the manufacturer or 
distributor, they have similar ingredients and/or yield media comparable to
 those obtained from the formulas given herein.
 
In preparing media by the formulas set forth herein, dissolve the soluble 
solids in the water, using heat, if necessary, to effect complete solution,
 and add solutions of hydrochloric acid or sodium hydroxide in quantities 
sufficient to yield the desired pH in the medium when it is ready for use.
 Determine the pH at 25 ± 2.
 
Where agar is called for in a formula, use agar that has a moisture content of
 not more than 15%. Where water is called for in a formula, use Purified Water.
 
PH 7.2 Phosphate Buffer 
Stock Solution— Dissolve 34 g of monobasic potassium phosphate in about 500
 mL of water contained in a 1000-mL volumetric flask. Adjust to pH 7.2 ± 0.1
 by the addition of sodium hydroxide TS (about 175 mL), add water to volume,
 and mix. Dispense and sterilize. Store under refrigeration.
 
For use, dilute the Stock Solution with water in the ratio of 1 to 800, and 
sterilize. 

Media 
Unless otherwise indicated, the media should be sterilized by heating in an 
autoclave (see Steam Sterilization under Sterilization 1211), the exposure 
time depending on the volume to be sterilized.

I. Fluid Casein Digest–Soy Lecithin–Polysorbate 20 Medium 
 
Pancreatic Digest of Casein 20 g 
Soy Lecithin 5 g 
Polysorbate 20 40 mL 
Water 960 mL 
Dissolve the pancreatic digest of casein and soy lecithin in 960 mL of water, 
heating in a water bath at 48 to 50 for about 30 minutes to effect solution. 
Add 40 mL of polysorbate 20. Mix, and dispense as desired.
 
II. Soybean–Casein Digest Agar Medium 
 
Pancreatic Digest of Casein 15.0 g 
Papaic Digest of Soybean Meal 5.0 g 
Sodium Chloride 5.0 g 
Agar 15.0 g 
Water 1000 mL 
pH after sterilization: 7.3 ± 0.2. 
III. Fluid Soybean–Casein Digest Medium 
 
Prepare as directed for Soybean–Casein Digest Medium under Sterility Tests 
 
IV. Mannitol–Salt Agar Medium 
 
Pancreatic Digest of Casein 5.0 g 
Peptic Digest of Animal Tissue 5.0 g 
Beef Extract 1.0 g 
D-Mannitol 10.0 g 
Sodium Chloride 75.0 g 
Agar 15.0 g 
Phenol Red 0.025 g 
Water 1000 mL 
Mix, then heat with frequent agitation, and boil for 1 minute to effect
 solution. 
pH after sterilization: 7.4 ± 0.2. 
V. Baird–Parker Agar Medium 
 
Pancreatic Digest of Casein 10.0 g 
Beef Extract 5.0 g 
Yeast Extract 1.0 g 
Lithium Chloride 5.0 g 
Agar 20.0 g 
Glycine 12.0 g 
Sodium Pyruvate 10.0 g 
Water 950 mL 
Heat with frequent agitation, and boil for 1 minute. Sterilize, cool to 
between 45 and 50, and add 10 mL of sterile potassium tellurite solution (1 in 
100) and 50 mL of egg-yolk emulsion. Mix intimately but gently, and pour into 
plates. (Prepare the egg-yolk emulsion by disinfecting the surface of whole 
shell eggs, aseptically cracking the eggs, and separating out intact yolks 
into a sterile graduated cylinder. Add sterile saline TS to obtain a 3 to 7 
ratio of egg yolk to saline. Add to a sterile blender cup, and mix at high 
speed for 5 seconds.) 
pH after sterilization: 6.8 ± 0.2. 
VI. Vogel–Johnson Agar Medium 
 
Pancreatic Digest of Casein 10.0 g 
Yeast Extract 5.0 g 
Mannitol 10.0 g 
Dibasic Potassium Phosphate 5.0 g 
Lithium Chloride 5.0 g 
Glycine 10.0 g 
Agar 16.0 g 
Phenol Red 25.0 mg 
Water 1000 mL 
Boil the solution of solids for 1 minute. Sterilize, cool to between 45 and 
50, and add 20 mL of sterile potassium tellurite solution (1 in 100). 

pH after sterilization: 7.2 ± 0.2. 
VII. Cetrimide Agar Medium 
 
Pancreatic Digest of Gelatin 20.0 g 
Magnesium Chloride 1.4 g 
Potassium Sulfate 10.0 g 
Agar 13.6 g 
Cetyl Trimethylammonium Bromide (Cetrimide) 0.3 g 
Glycerin 10.0 mL 
Water 1000 mL 
Dissolve all solid components in the water, and add the glycerin. Heat, with 
frequent agitation, and boil for 1 minute to effect solution. 
pH after sterilization: 7.2 ± 0.2. 
VIII. Pseudomonas Agar Medium for Detection of Fluorescin 
 
Pancreatic Digest of Casein 10.0 g 
Peptic Digest of Animal Tissue 10.0 g 
Anhydrous Dibasic Potassium Phosphate 1.5 g 
Magnesium Sulfate (MgSO4·7H2O) 1.5 g 
Glycerin 10.0 mL 
Agar 15.0 g 
Water 1000 mL 
Dissolve the solid components in the water before adding the glycerin. Heat,
 with frequent agitation, and boil for 1 minute to effect solution. 

pH after sterilization: 7.2 ± 0.2. 
IX. Pseudomonas Agar Medium for Detection of Pyocyanin 
 
Pancreatic Digest of Gelatin 20.0 g 
Anhydrous Magnesium Chloride 1.4 g 
Anhydrous Potassium Sulfate 10.0 g 
Agar 15.0 g 
Glycerin 10.0 mL 
Water 1000 mL 
Dissolve the solid components in the water before adding the glycerin. Heat,
 with frequent agitation, and boil for 1 minute to effect solution.
 
pH after sterilization: 7.2 ± 0.2. 
X. Fluid Lactose Medium 
 
Beef Extract 3.0 g 
Pancreatic Digest of Gelatin 5.0 g 
Lactose 5.0 g 
Water 1000 mL 
Cool as quickly as possible after sterilization. 
pH after sterilization: 6.9 ± 0.2. 
XI. Fluid Selenite–Cystine Medium 
 
Pancreatic Digest of Casein 5.0 g 
Lactose 4.0 g 
Sodium Phosphate 10.0 g 
Sodium Acid Selenite 4.0 g 
L-Cystine 10.0 mg 
Water 1000 mL 
Final pH: 7.0 ± 0.2. 
Mix, and heat to effect solution. Heat in flowing steam for 15 minutes. Do not 
sterilize. 
XII. Fluid Tetrathionate Medium 
 
Pancreatic Digest of Casein 2.5 g 
Peptic Digest of Animal Tissue 2.5 g 
Bile Salts 1.0 g 
Calcium Carbonate 10.0 g 
Sodium Thiosulfate 30.0 g 
Water 1000 mL 
Heat the solution of solids to boiling. On the day of use, add a solution 
prepared by dissolving 5 g of potassium iodide and 6 g of iodine in 20 mL of 
water. Then add 10 mL of a solution of brilliant green (1 in 1000), and mix.
 Do not heat the medium after adding the brilliant green solution. 
XIII. Brilliant Green Agar Medium 
 
Yeast Extract 3.0 g 
Peptic Digest of Animal Tissue 5.0 g 
Pancreatic Digest of Casein 5.0 g 
Lactose 10.0 g 
Sodium Chloride 5.0 g 
Sucrose 10.0 g 
Phenol Red 80 mg 
Agar 20.0 g 
Brilliant Green 12.5 mg 
Water 1000 mL 
Boil the solution of solids for 1 minute. Sterilize just prior to use, melt 
the medium, pour into petri dishes, and allow to cool. 
pH after sterilization: 6.9 ± 0.2. 
XIV. Xylose–Lysine–Desoxycholate Agar Medium 
 
Xylose 3.5 g 
L-Lysine 5.0 g 
Lactose 7.5 g 
Sucrose 7.5 g 
Sodium Chloride 5.0 g 
Yeast Extract 3.0 g 
Phenol Red 80 mg 
Agar 13.5 g 
Sodium Desoxycholate 2.5 g 
Sodium Thiosulfate 6.8 g 
Ferric Ammonium Citrate 800 mg 
Water 1000 mL 
Final pH: 7.4 ± 0.2. 
Heat the mixture of solids and water, with swirling, just to the boiling 
point. Do not overheat or sterilize. Transfer at once to a water bath 
maintained at about 50, and pour into plates as soon as the medium has cooled.
 
XV. Bismuth Sulfite Agar Medium 
 
Beef Extract 5.0 g 
Pancreatic Digest of Casein 5.0 g 
Peptic Digest of Animal Tissue 5.0 g 
Dextrose 5.0 g 
Sodium Phosphate 4.0 g 
Ferrous Sulfate 300 mg 
Bismuth Sulfite Indicator 8.0 g 
Agar 20.0 g 
Brilliant Green 25 mg 
Water 1000 mL 
Final pH: 7.6 ± 0.2. 
Heat the mixture of solids and water, with swirling, just to the boiling 
point. Do not overheat or sterilize. Transfer at once to a water bath 
maintained at about 50, and pour into plates as soon as the medium has cooled. 
XVI. Triple Sugar–Iron–Agar Medium 
 
Pancreatic Digest of Casein 10.0 g 
Pancreatic Digest of Animal Tissue 10.0 g 
Lactose 10.0 g 
Sucrose 10.0 g 
Dextrose 1.0 g 
Ferrous Ammonium Sulfate 200 mg 
Sodium Chloride 5.0 g 
Sodium Thiosulfate 200 mg 
Agar 13.0 g 
Phenol Red 25 mg 
Water 1000 mL 
pH after sterilization: 7.3 ± 0.2. 
XVII. MacConkey Agar Medium 
 
Pancreatic Digest of Gelatin 17.0 g 
Pancreatic Digest of Casein 1.5 g 
Peptic Digest of Animal Tissue 1.5 g 
Lactose 10.0 g 
Bile Salts Mixture 1.5 g 
Sodium Chloride 5.0 g 
Agar 13.5 g 
Neutral Red 30 mg 
Crystal Violet 1.0 mg 
Water 1000 mL 
Boil the mixture of solids and water for 1 minute to effect solution. 
pH after sterilization: 7.1 ± 0.2. 
XVIII. Levine Eosin–Methylene Blue Agar Medium 
 
Pancreatic Digest of Gelatin 10.0 g 
Dibasic Potassium Phosphate 2.0 g 
Agar 15.0 g 
Lactose 10.0 g 
Eosin Y 400 mg 
Methylene Blue 65 mg 
Water 1000 mL 
Dissolve the pancreatic digest of gelatin, the dibasic potassium phosphate,
 and the agar in the water, with warming, and allow to cool. Just prior to 
use, liquefy the gelled agar solution, add the remaining ingredients, as 
solutions, in the following amounts, and mix: for each 100 mL of the liquefied 
agar solution—5 mL of lactose solution (1 in 5), 2 mL of the eosin Y solution 
(1 in 50), and 2 mL of methylene blue solution (1 in 300). The finished medium 
may not be clear. 
pH after sterilization: 7.1 ± 0.2. 
XIX. Sabouraud Dextrose Agar Medium 
 
Dextrose 40 g 
Mixture of equal parts of Peptic Digest of Animal Tissue and Pancreatic Digest
 of Casein 10 g 
Agar 15 g 
Water 1000 mL 
Mix, and boil to effect solution. 
pH after sterilization: 5.6 ± 0.2. 
XX. Potato Dextrose Agar Medium 
 
Cook 300 g of peeled and diced potatoes in 500 mL of water prepared by 
distillation, filter through cheesecloth, add water prepared by distillation 
to make 1000 mL, and add the following:
 
Agar 15 g 
Glucose 20 g 
Dissolve by heating, and sterilize. 
pH after sterilization: 5.6 ± 0.2. 
For use, just prior to pouring the plates, adjust the melted and cooled to 45
 medium with sterile tartaric acid solution (1 in 10) to a pH of 3.5 ± 0.1. 
Do not reheat the pH 3.5 medium. 

.
.
.
.
.