一、简要说明
GB 5009.89—2023于2023.9.6发布,于2024年3月6日实施。新标准与GB 5009.89—2016相比,主要变化如下:
高效液相色谱法调整为第一法,微生物法调整为第二法;
增加了第二法 微生物法中的微孔板法、试样处理后调节pH的要求;
修改了第二法 微生物法的标准曲线浓度范围、精密度和定量限。
二、对比详情
新旧版标准变更的内容详细列举如表2。
表2 新旧标准变更内容详细对比表格
变更条目 |
变更内容 |
详情解释 |
1范围 |
第一法(色谱)适用于
第二法(微生物)适用于 |
针对使用范围进行了变更。 |
2原理 |
第一法液相色谱法原理描述变更
样品经酶解、沉淀蛋白质等前处理后 |
紫外波长的数值实际操作中仍使用261nm。 |
3.1试剂 |
3.1.1盐酸(HCl):优级纯。 3.1.2氢氧化钠(NaOH):优级纯。 3.1.3甲醇(CH3OH):色谱纯 3.1.4异丙醇(C3H8O):色谱纯。 3.1.5庚皖磺酸钠(C7H15NaO3S):色谱纯。 3.1.6淀粉酶:酶活力≥1.5 µ/mg。
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旧版使用高氯酸配置流动相,新版更改为盐酸。 |
3.2试剂配制 |
3.2试剂配制 3.2.1盐酸溶液(5.0mol/L):量取415mL盐酸,加水定容至1000mL。 3.2.2盐酸溶液(0.lmol/L):吸取8.3mL盐酸,加水定容至1000mL。 3.2.3氢氧化钠溶液(5.0mol/L):称取200g氢氧化钠,加水定容至1000mL。 3.2.4氢氧化钠溶液(0.1mol/L):吸取20mL氢氧化钠溶液(5.0mol/L),加水定容至1000mL。
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5.2液相色谱参考条件 |
液相色谱参考条件如下: a)液相色谱柱:C18(粒径5µm,250mm×4.6mm)或等效柱。 b)流动相:甲醇70mL、异丙醇20mL、庚皖磺酸钠1g,用910mL水溶解并混匀后,用盐酸凋节pH至2.1±0.1。 c)柱温:25℃±0.5℃。 d)流速:1.0mL/min。 e)进样量:20µL。 f)紫外检测波长:261nm。 |
旧版使用高氯酸配置流动相,新版更改为盐酸。 |
3.3标准品 3.4标准溶液配制 |
3.3.1烟酸(C6H5NO2,CAS号:59-67-6):纯度≥98%,或经国家认证并授予标准物质证书的标准品。 3.3.2烟酰胺(C6H6N2O,CAS号:98-92-0):纯度≥98%,或经国家认证并授予标准物质证书的标准品。 3.4.1烟酸和烟酰胺标准储备溶液(1.000mg/mL):将烟酸(或烟酰胺)标准品置入含五氧化二磷的干燥器中,干燥过夜。准确称取各0.1 g(精确到1mg),用0.1mol/L盐酸溶解,定容至100mL。2℃~8℃冷藏可保存1个月。
3.4.2烟酸和烟酰胺标准混合中间液(100.0µg/mL):准确吸取烟酸和烟酰胺标准储备液各10.0mL于100mL容量瓶中,加水定容至刻度,混匀。2℃~8℃冷藏可保存1个月。 3.4.3烟酸和烟酰胺标准混合工作液:分别准确吸取标准混合中间液1.0mL、2.0mL、5.0mL、10.0mL、20.0mL于100 mL容量脰中,加水定容至刻度,混匀,得到质量浓度分别为1.0µg/mL、2.0µg/mL、5.0µg/mL、10.0µg/mL、20.0µg/mL的标准混合工作液。临用现配。 |
标准品的纯度原99%,旧版无干燥器,冷藏温度4℃,新增冷藏保存时间。中间液旧版无保存条件,校正标准储备液删除。 |
4仪器和设备 |
4.1高效液相色谱仪:配紫外检测器或二极管阵列检测器。 4.2天平:感量分别为0.1mg和0.01g。 4.3恒温培养箱:30℃~80℃。 4.4超声设备。 4.5 pH计:精度为0.1。 4.6粉碎机。
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5分析步骤 5.1样品前处理 |
5.1.1试样制备 样品预处理:取有代表性的样品至少200g,块状或颗粒状样品用粉碎机粉碎,粉末状、糊状或液体样品充分混匀,置于密闭的容器内。 5.1.2淀粉类和含淀粉的食品 5.1.2.1称取混合均匀固体试样约5.0g(精确到0.01g),置于150mL锥形瓶中,加入约25mL 45℃~50℃的水,加入约0.5g淀粉酶,摇匀后向锥形瓶中充氮,盖上塞,置于50℃~60℃的培养箱内酶解约30min,取出冷却至室温。 5.1.2.2称取混合均匀液体试样约20.0g(精确到0.01g),置于150mL锥形瓶中,加入约0.5g淀粉酶,摇匀后向锥形瓶中充氮,盖上塞,置于50℃~60℃的培养箱内酶解约30min,取出冷却至室温。 5.1.3不含淀粉的食品 5.1.3.1称取混合均匀固体试样约5.0g(精确到0.01g),置于150mL锥形瓶中,加入约25mL 45℃~50℃的水,置于超声设备中振荡约10min以上充分溶解,静置5min~10min,冷却至室温。 5.1.3.2称取混合均匀液体试样约20.0g(精确到0.01g),置于150mL锥形瓶中,置于超声设备中振荡约10min以上,充分溶解,静置5min~10min,冷却至室温。 |
样品预处理标明样品200g,并且将固体液体试样的步骤分开,实际方式步骤上无变更。 |
5.1.4试样提取 |
注1:必要时,试样测定液用水进行适当的稀释(f),使试样测定液中烟酸和烟酰胺质量浓度在1µg/mL~20µg/mL范围内。 注2:推荐充氮条件:压力0.055MPa~0.062MPa氮气充氮30s。 |
增加充氮条件。 |
6.1试样烟酸或烟酰胺含量计算 |
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新增加的f为5.1.4中注1的稀释倍数。 |
6.2试样烟酸和烟酰胺总含量计算 |
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维生素PP更改为烟酸烟酰胺,同种物质。 计算结果有效位数变更。 |
8.其他 |
固体样品:当称样量为5g时,烟酸检出限为30µg/l00g,定量限为l00µg/100g,烟酰胺检出限为40µg/l00g,定量限为120µg/l00g。 液体样品:当称样量为20g时,烟酸检出限为7.5µg/100g,定量限为25µg/100g,烟酰胺检出限为10µg/100g,定量限为30µg/100g。
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增加了样品不同的检出限,对应5.1步骤固体液体不同样品处理。 |
9原理 |
烟酸和烟酰胺是植物乳植杆菌(LactiPLantibaciLLusPLantarum)生长所必需的营养素,在烟酸测定培养基中,植物乳植杆菌的生长与烟酸(或烟酰胺)的含量呈相关性,根据烟酸(或烟酰胺)含量与透光率(或吸光度)的标准曲线计算出试样中烟酸(或烟酰胺)含量。 |
菌名进行变更。 |
10试剂和材料 |
除非另有规定,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的一级水或二级水。 |
增加可用一级水。 |
10.1菌株 |
植物乳植杆菌(LactipLantibaciLLuspLantarum)(原植物乳杆菌,LactobaciLLuspLantarum)ATCC8014或等效菌株。 |
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10.3试剂 |
10.3.1无水乙醇(C2H5OH)。
10.3.2硫酸(H2SO4)95%~98%。 10.3.3氢氧化钠(NaOH)。 10.3.4氯化钠(NaCl)。 |
标定了硫酸纯度要求。 |
10.5标准品 |
10.5.1烟酸(C6H5NO2,CAS号:59-67-6):纯度≥98%,或经国家认证并授予标准物质证书的标准品。 10.5.2烟酰胺(C6H6N2O,CAS号:98-92-0):纯度≥98%,或经国家认证并授予标准物质证书的标准品。
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纯度要求更改。 |
10.6标准溶液配制 |
10.6.1烟酸(或烟酰胺)标准储备液(50µg/mL):将烟酸(或烟酰胺)标准品置于含五氧化二磷的干燥器中,干燥过夜。按纯度称取,使烟酸(或烟酰胺)含量为50.0mg(精确至0.00lg),用乙醇溶液(25%) 溶解移入l000mL容量瓶,定容至刻度。 原为称取50.0mg烟酸标准品,用乙醇溶液溶解至500mL容量瓶中,定容,新版使用1000mL的容量瓶。且没有干燥过夜的操作。 10.6.2烟酸(或烟酰胺)标准中间液(500ng/mL):吸取1.0mL烟酸(或烟酰胺)标准储备液(50µg/mL)至100mL容量瓶,用乙醇溶液(25%)定容至刻度。 原为吸取1.0mL烟酸标准储备液置于100mL棕色容量瓶中,用乙醇稀释定容。 10.6.3烟酸(或烟酰胺)标准工作液:分两个质量浓度,高质量浓度溶液的质量浓度为10ng/mL,低质量浓度溶液的质量浓度为5ng/mL。从中间液中(500ng/mL)吸取2次,各2mL,分别移入l00mL和200mL容量瓶,用水定容至刻度。 注:配制标准溶液使用棕色容量瓶,配制后的标准溶液要用棕色试剂瓶2℃~8℃冷藏于冰箱内。标准储备液和中间液保存期6个月,标准使用液临用现配。 |
称量和容器变更,新版新增标准溶液储存时间和条件要求。 |
11仪器和设备 |
11.1分析天平:感量为0.1mg和 11.2离心机。 11.3涡旋混合器。 11.4pH计:精度为0.01 11.5恒温培养箱:36℃±1℃。 11.6分光光度计:540nm~60nm。 11.7酶标仪:540nm~660nm。 11.8冰箱:2℃~8℃。 11.9无菌微孔板。 11.10定量滤纸:直径90mm。 11.11试管:18mm*180mm。 11.12容量瓶:容量100mL、200mL、250mL、500mL。 11.13单刻度移液管:1mL、5mL、10mL。 11.14刻度吸管:5mL(具0.1mL刻度)。 11.15玻璃漏斗:直径100mm。 11.16锥形瓶:容量250mL。 11.17烧杯:容量100mL。 11.18分液器:0mL~10mL。 11.19微量移液器:1000µL,200µL。 11.20无菌离心管:1.5mL。 11.21针头过滤器:孔径0.22µm。 注:清洗后的玻璃器皿和金属器具在250℃下干热1h~2h。 |
删除:均质设备、压力蒸汽消毒器、超净工作台、超声波振荡器。 |
12分析步骤 |
12.1测试菌悬液制备 12.1.1将植物乳植杆菌菌株活化后,用接种针穿刺接种到乳酸杆菌琼脂培养基上,36℃±1℃培养16h~24h,再转种2代~3代以增强活力。以斜面培养物方式置冰箱冷藏,可保存1个月。 12.1.2将24h内活化后的菌株转种至已灭菌的乳酸杆菌肉汤中,36℃±1℃培养16h~4h。以3000r/min~5000r/min离心5 min,弃去上清液,加入10mL生理盐水,用涡旋混合器振荡该悬液,再离心约5min,弃去上清液。如前操作清洗2次~3次后,再加10mL生理盐水,振荡混匀。吸取适量该菌悬液于10mL生理盐水中,混匀制成测试菌悬液。 12.1.3以生理盐水做空白,用分光光度计于550nm波长下测定测试菌悬液透光率(%T),调整上述菌液加入量,使测试菌悬液透光率在60%T~80%T。 |
原为取出后放入2℃~4℃冰箱中保存。每月至少传种一次,作为储备菌株保存。 新规定离心机的转速。 原使用721分光光度计。 |
12.2试样提取 |
块状、颗粒状试样需粉碎;乳粉、米粉等粉状试样需混匀;果蔬、肉、蛋、鱼、动物内脏等需制成食糜;半固体食品等试样需匀浆混匀;液体试样用前振摇混合。 12.2.1固态试样:准确称取(精确至0.001g)试样于锥形瓶中,其中新鲜果蔬试样2g~5g;谷类、豆类、坚果类、内脏、生肉、干制试样0.2g~1g;乳粉、米粉等试样2g~3g;一般营养素补充剂、复合营养强化剂0.1g~0.5g;其他食品0.2g~1g。 12.2.2液体饮料或流质、半流质试样:称取5g~10g(精确至0.001g)(或用单刻度移液管吸取适量体积)于锥形瓶中。特殊用途饮料称取样品后不需按12.2.3进行处理,称样后直接定容至100mL(V)后,按12.2.4进行稀释。 如果试样烟酸(或烟酰胺)含量过低,可适当提高称样量。 12.2.3加入试样质量(以克计)10倍的硫酸溶液B(以毫升计),将上述混合物放入压力蒸汽灭菌器,121℃下水解30min,取出迅速水浴冷却至室温。用氢氧化钠溶液A和氢氧化钠溶液B调节pH至4.5±0.2,移入250mL(V1)容量瓶中,用水定容至刻度。 用定量滤纸过滤,最初约10mL滤液应弃去,吸取5mL(V2)滤液于100mL烧杯中,加水约20mL,用氢氧化钠溶液B调节pH至6.8±0.2,移入100mL(V)容量瓶中加水定容至刻度。 12.2.4稀释:根据试样中烟酸(或烟酰胺)含量用水对提取液进行适当稀释,使稀释后试样提取液中烟或烟酰胺)质量浓度为5ng/mL~12ng/mL。 |
固态和液体试样重新划分称样方式。 原来用0.1mol/L氢氧化钠溶液调pH至6.0~6.5,再用0.1mol/L盐酸调pH至4.5±0.1,现在是用不同浓度的氢氧化钠AB调到4.5±0.2。 |
12.3.1试管培养法 12.3.1.1标准曲线系列管 |
按表l顺序加入水、标准曲线工作液和烟酸测定用培养基至培养试管中,表l中每一编号需制作3管。未接种空白试管(UN)、接种空白试管(IN)、标准系列管S1~S8中烟酸(或烟酰胺)质量浓度分别为0ng、0ng、5ng/mL、l0ng/mL、l5ng/mL、20ng/mL、25ng/mL、30ng/mL、40ng/mL、50ng/mL。
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标准曲线的浓度范围变小,提高测量精密度。 |
12.3.1.3灭菌 |
将标准曲线系列管和试样系列管放入压力蒸汽灭菌器,121℃下灭菌5min(商品培养基按标签说明进行灭菌),取出后迅速用水浴冷却到室温。为了保证加热和冷却过程中温度均匀,灭菌试管不应距离灭菌器内壁过近,试管摆放不应过密,以免影响空气流通。 |
新版增加冷却到室温,强调了空气流通。 |
12.3.1.4接种 |
在无菌条件下,向上述每管中(标准曲线未接种空白管UN除外)各加入l滴(50µL~100µL)测试菌液,加盖,充分振荡混匀所有培养管。 |
明确滴加一滴的范围。 |
12.3.1.5培养 |
将试管放入恒温培养箱内,36℃土1℃下培养18h~24h。 |
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12.3.1.6测定 |
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新增空白对照要目视澄清。 进行两次空白测试。 新标准里试样超过标准曲线S1-S8范围的要舍去。 结果筛选要求更改。 |
12.3.2微孔板培养法 |
新增条目方法 |
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12.3.2.1标准曲线系列离心管 |
将烟酸标准曲线工作液在无菌条件下过滤除菌至无菌离心管中,按表3制备3套标准曲线系列离心管。未接种空白孔(UN)、接种空白孔(IN)、S1~S8中烟酸(或烟酰胺)质量浓度与试管法相同。
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新方法的标准曲线跟试管法的配制方法类似,区别于工作液增加量不同。 |
12.3.2.2试样系列离心管 |
将稀释后的试样提取液(12.2.4)无菌条件下过滤除菌,按表4制备3套试样系列离心管。
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12.3.2.3接种和培养 |
烟酸测定培养基灭菌冷却后(或者尤菌条件下过滤除菌),每10 mL培养基中加入测试菌悬液(12.1.3)100µL~200µL,混匀,吸取150µL加入微孔板中。UN(未接种空白)使用未加入菌悬液的培养基。从标准曲线系列离心管和试样系列离心管吸取150µL加入微孔板中,覆膜,置于恒温培养箱中,36℃±1℃下培养18h~24h。 |
需留出空白对照UN。 |
12.3.2.4测定 |
培养结束后,对每个孔进行目测检查,未接种空白孔(UN)内培养液应是澄清的,否则测定无效。标准曲线孔和试样孔中培养液的吸光度应有梯度差别。将微孔板置于酶标仪内,540nm~550nm(或者610nm~630nm)选择稳定波长进行比色。 记录比色后的吸光度,数据处理同试管培养法12.3.1.6.2和12.3.1.6.3。计算全部编号试样孔的总平均值为p,按式(3)根据稀释倍数和称样量计算出试样中烟酸(或烟酰胺)的含量。 注:也可使用与本标准检测原理相同且经等效验证的烟酸和烟酰胺检测试剂盒。 |
数据处理与试管法相同。 |
13分析结果的表述 |
试样中烟酸(或烟酰胺)含量按式(3)计算。
计算结果保留3位有效数字 注1:对于特殊用途饮料等不经处理直接定容的样品,式中去除Vl和V2。 注2:如果用烟酸标准品配制标准溶液,测定结果则以烟酸计;如果用烟酰胺标准品配制标准溶液,测定结果以烟酰胺计。 注3:烟酰胺的结果乘以换算系数1.008,可以转化为烟酸的结果。 注4:如果样品中烟酸(或烟酰胺)含量较高,可适当进一步稀释;如果含量较低,可适当提高样品称样量或降低稀释倍数。 |
新增结果有效数字要求,烟酸烟酰胺换算系数。 |
14精密度 |
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的15%。
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精密度合并 |
15其他 |
15.1需要提取的样品:当称样量为2g本标准定量限为1250µg/100g。 15.2特殊用途饮料等不经12.2.3步骤处理直接定容的样品:当称样量为10g时定量限为5µg/100g。 |
重新更改定量限,并新增特殊用途饮料的定量限。 |
新旧版标准培养基变更的内容详细列举见表3。
表3 新旧版标准培养基变更内容详细对比表格
培养基 |
版本 |
成分变更 |
配制方法变更 |
HB8636 乳酸杆菌琼脂培养基 |
新版 |
胨化乳15.0g 酵母浸膏5.0g 葡萄糖10.0g 番茄汁100mL 磷酸二氢钾2.0g 聚山梨糖单油酸酣1.0g 琼脂10.0g 蒸熘水1000mL |
番茄汁的制备:将新鲜的西红柿洗净后称重切碎,加等量的蒸熘水在100℃水浴中加热,搅拌90min,然后用纱布过滤,校正pH为7.0±0.1,将浸出液分装后,121℃下高压灭菌15min。
将各成分加入蒸熘水中,加热溶解,搅拌的同时保持煮沸状态2min~3min,凋节pH至6.8±0.2(20℃~25℃),混合均匀后分装试管,每管10mL。121℃下高压灭菌15min。 |
旧版 |
光解胨15g 葡萄糖10g 磷酸氢二钾2g 聚山梨糖单油酸酯1g 番茄汁100mL 琼脂10g 蒸馏水1000mL |
先将除琼脂以外的其他成分溶解于蒸馏水中,调节pH6.8±0.2(20℃~25℃),再加入琼脂,加热煮沸,使琼脂融化。 混合均匀后分装试管,每管10mL。121℃高压灭菌15min,备用。 |
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HB8637 乳酸杆菌肉汤培养基
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新版 |
胨化乳15.0g 酵母浸膏5.0g 葡萄糖10.0g 番茄汁100mL 磷酸二氢钾2.0g 聚山梨糖单油酸酯1.0g 蒸熘水1000mL |
将各成分加入蒸熘水中,加热溶解,搅拌的同时保持煮沸状态2min~3min,凋节pH至6.8±0.2(20℃~25℃),混合均匀后分装试管,每管10mL。121℃下高压灭菌15min。 |
旧版 |
光解胨15g 葡萄糖10g 磷酸氢二钾2g 聚山梨糖单油酸酯1g 番茄汁100mL 蒸馏水1000mL |
将上述成分溶解于水中,调节pH6.8±0.2(20℃~25℃), 分装10mL于试管中,121℃高压灭菌15min,备用。 |
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HB7019-2 烟酸(或烟酰胺)测定用培养基
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新版 |
去维生素水解酪蛋白12.0g
葡萄糖40.0g 乙酸钠20.0g L-胱氨酸0.4g DL-色氨酸0.2g 盐酸腺膘呤20.0mg 盐酸鸟膘呤20.0mg 尿嘧啶20.0mg 盐酸硫胺素200.0µg 泛酸钙200.0µg 盐酸吡哆醇400.0µg 核黄素400.0µg 对氨基苯甲酸200.0µg
生物素0.8µg 磷酸氢二钾1.0g 磷酸二氢钾1.0g 硫酸镁0.4g 氯化钠20.0mg 硫酸亚铁20.0mg 硫酸猛20.0mg 蒸熘水1000mL |
将上述成分溶解于水中,加热溶解,搅拌的同时保持煮沸状态2 min~3 min,凋节pH至6.8±0.2(20℃~25℃),备用。 |
旧版 |
将上述成分溶解于水中,调pH至6.7±0.2(20℃~25℃),备用。 |
三、对比解读
(1)标准适用范围:对色谱法中原强化食品的范围进行变更,重新规定为“适用于调制乳粉、特殊膳食用食品和特殊用途饮料”,将微生物法的适用范围扩大为食品中烟酸(烟酰胺)的测定。
(2)将原理中样品前处理的描述更改为“酶解、沉淀蛋白胨”。
(3)色谱法中流动相的配制方法进行更改,不再使用高氯酸进行pH调整,新版本中变更为盐酸(GR)。
(4)标准品纯度色谱法中由不低于99%变更为不低于98%,微生物法中由不低于99.5%变更为不低于98%。
(5)烟酸和烟酰胺标准储备溶液删除浓度校准,新增放入含有五氧化二氮的干燥器中干燥过夜,且新增可冷藏2℃~8℃保存1月。新版标准中冷藏条件均由4℃保存变更为2℃~8℃。
(6)色谱仪的要求增加二极管阵列检测器,样品处理中预处理对样品称样要求至少200g。新版将固体、液体试样的样品处理步骤分离,对应检出限和定量限的不同要求。
(7)新版将维生素PP更改为烟酸和烟酰胺,并在计算公式中增加稀释倍数,对应试样提取中测定液的稀释,目的为保证测定液的质量浓度在一定范围内。计算结果的有效位数为3位有效数字。
(8)微生物法中对菌种名称做出变更,由植物乳杆菌变更为植物乳植杆菌,试剂中删除了盐酸,把浓硫酸改为95%~98%的硫酸。试剂配制方法没有改动。标准溶液浓度变更,新版标准中允许标准储备溶液和中间液冷藏2℃~8℃保存6个月,原版标准中为2℃~4℃冷藏且未规定存储时长。
(9)新版标准中测试菌可在转种后以斜面冷藏保存1个月,测试菌悬液制备中规定离心机转速3000r/min~5000r/min。微生物法中试样提取与色谱法相同均将固体试样与液体试样的步骤分离。通过定量滤纸过滤后的最初10mL滤液需去除。
(10)微生物法中标准曲线浓度范围变小,由0ng/mL~500ng/mL变更为0ng/mL~50ng/mL,此变更与配制标准溶液时浓度变小相对应。新标准在灭菌与接种培养步骤中增加冷却到室温,强调空气流通,以及规定滴加一滴测试液的体积范围,变更培养时间不再进行额外延长培养。
(11)新增空白对照要目视澄清,使用未接种空白试管和接种空白试管进行两次调节透光率。新标准里试样超过标准曲线S1~S8范围的要舍去。结果筛选的要求更改。
(12)新版新增微生物法中的微孔板法,新方法的标准曲线跟试管法的配制方法类似,区别于工作液增加量不同,数据处理与试管法相同。新增结果有效数字要求,烟酸烟酰胺换算系数。各类食品的精密度要求合并,新版要求在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的15%。新版重新更改定量限,并新增特殊用途饮料的定量限。
四、涉及产品
新版本中主要对培养基原料成分和配制方式进行变动,原料中光解胨变更为胨化乳、新增酵母浸膏等,配制方式中新增煮沸时间的要求以及番茄汁的制备方法。详细信息前文以提及。涉及的培养基产品信息见表1。
表1 新旧标准中涉及的培养基及编号
序号 |
新标准(2023版) |
旧标准(2016版) |
||
名称 |
货号 |
名称 |
货号 |
|
1 |
乳酸杆菌琼脂培养基 |
HB8636 |
一致 |
一致 |
2 |
乳酸杆菌肉汤培养基 |
HB8637 |
一致 |
一致 |
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烟酸(或烟酰胺)测定用培养基 |
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烟酸测定用培养基 |
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